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    Glycotech節(jié)苷脂的微量分離和純化方法

    發(fā)布時(shí)間: 2022-11-05  點(diǎn)擊次數(shù): 992次

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    1.節(jié)苷脂的微量分離和純化方法 Stephan Ladisch ~ 兒童國(guó)家醫(yī)學(xué)中心癌癥和移植生物學(xué)中心主任,華盛頓特區(qū)2010這種溶劑分配方法允許從小樣品和節(jié)苷脂濃度低的樣品中分離節(jié)苷脂,特別是相對(duì)于潛在污染蛋白質(zhì)和其他大分子量物種的濃度。該方法包括三個(gè)步驟: (1)制備干式總脂提取物; (2)在二異丙醚/1-丁醇/NaCl 水溶液中對(duì)總脂提取物進(jìn)行分配; (3) Sephadex G-50凝膠排阻色譜法。最終的總節(jié)苷脂制劑被凍干并保存在干燥狀態(tài)。凍干細(xì)胞、血漿或組織的總脂提取物。干燥后的總脂提取物在 DIPE/1-丁醇/鹽水相和有機(jī)相之間的分配。Sephadex G-50凝膠過濾去除含節(jié)苷脂水相中的低分子污染物。1.總脂提取 1.總脂提取物: 氯甲醇方案: 1。將樣本(細(xì)胞、血漿、均質(zhì)組織)放入適當(dāng)大小的圓底玻璃管或燒瓶中凍干(30倍組織或血漿體積)。2。用玻璃棒將凍干的樣品粉碎成細(xì)粉。加入氯仿: 甲醇(C: M)1:1。(20體積/克濕重組織或細(xì)胞,10體積/毫升血漿或血清)。用超聲波將固體分散在浴室超聲波儀中,用 N2和蓋子蓋緊橡皮布。(濕萃取,首先加入10卷。攪拌甲醇,然后10伏。氯仿)。3。第一次提取18小時(shí)。用磁力攪拌,在4 °C 下攪拌。4。每分鐘2000轉(zhuǎn)的離心管(750克,10分鐘).仔細(xì)傾倒全透明的上清液,不要轉(zhuǎn)移任何顆粒物質(zhì),并處理下面的每個(gè)(6)上清液。第二次提取用新鮮 C: M 1:1的額外原始體積重新提取總固體材料; 使用新鮮溶劑首先沖洗(4)中使用的離心管,然后將這些沖洗在原始提取燒瓶中。提取4小時(shí)。在4 °C N2下攪拌,然后像(4)中那樣加工第二種提取物。

    6.Rotovap (浴溫不高于20-25 °C)(4)(5)的組合上清液的體積減少到組合總體積的1/4。此時(shí)過夜冷卻至零下25攝氏度以沉淀蛋白質(zhì)。像上面一樣再次離心,恢復(fù)透明上清液。定量地將這種濃縮的總脂提取物轉(zhuǎn)移到離心管(# 8142)中,在離心管中進(jìn)行 DIPE/丁醇分離。保存顆粒直到后的 G-50階段,以防再加工是必要的。用一股 N2蒸發(fā)上清液至干燥,并用凍干法除去殘留的溶劑痕跡。注: 第一提取物去除了90% 以上的節(jié)苷脂,第二提取物中剩余的10% 與第一提取物沒有質(zhì)的區(qū)別,冷卻至 -20 °C 時(shí)去除的沉淀物中不含節(jié)苷脂。使用的 C: M 的體積沒有被發(fā)現(xiàn)在一個(gè)合理的范圍內(nèi)是關(guān)鍵的。我們已經(jīng)使用了多達(dá)10毫升/108細(xì)胞(即更高的體積) ,與通常的10-20體積相比,對(duì)回收率沒有影響。2.DIPE/1-丁醇/鹽水分隔

    材料: 二異丙基醚1-丁醇,試劑級(jí)雙蒸餾去離子水(ddH2O)鹽水溶液: 0.1% NaCl 0.3% NaCl1550ml 玻璃錐形離心管,聚四氟乙烯內(nèi)襯蓋(# 8142)方案: 階段: 有機(jī): 2體積 DIPE/1-丁醇,60:40v/v : 1體積鹽水溶液。1% 氯化鈉: 109個(gè)細(xì)胞的總脂提取物10毫升鹽水(最小體積為1毫升)。血漿: 對(duì)于血漿,使用 ddH2O: 2.0 ml ddH2O/總脂提取物1ml 血漿,最小水溶性容積為1ml。放射標(biāo)記的細(xì)胞節(jié)苷脂: 1.0毫升最小體積的生理鹽水(使用少至106個(gè)細(xì)胞)。組織: 對(duì)于組織,使用0.3% NaCl: 109個(gè)細(xì)胞 = 1克組織,因此每克組織使用10毫升生理鹽水。注意: 以下程序步驟的細(xì)節(jié)是至關(guān)重要的,必須遵守。一旦開始步驟(1) ,則應(yīng)立即執(zhí)行步驟(7)中的程序。在總脂提取物中加入有機(jī)(DIPE/1-丁醇)相,旋渦,超聲波直到樣品全分散??赡軙?huì)產(chǎn)生乳白色的溶液,但是大顆粒必須在進(jìn)入(2)之前被分散。加生理鹽水。3。執(zhí)行2分鐘。交替渦流與超聲波的結(jié)合。離心機(jī)10分鐘。轉(zhuǎn)速為2000轉(zhuǎn)(750xg)。5。從較低的水相中去除較高的有機(jī)相(與水相存在時(shí),留下輕微的界面乳狀液)。添加新鮮有機(jī)相的原始體積,重復(fù)步驟(3)(4)(5)進(jìn)行第二次分區(qū)。注: 隨后的節(jié)苷脂放射自顯影研究有兩個(gè)分區(qū),需要最高定性純度的組織和血漿樣品最多有三個(gè)分區(qū)。7。通過用 N2流去除溶劑痕跡,冷凍和凍干,準(zhǔn)備最終的水相(含節(jié)苷脂)用于下面的 STEP (3)。

    3.Sephadex G-50凝膠過濾

    材料:

    葡聚糖凝膠G-50150

    洗脫液:雙蒸餾去離子水(ddH2O

    紫外線監(jiān)測(cè)儀和記錄儀,在206nm處測(cè)量

    協(xié)議:

    將樣品重新溶解在適當(dāng)體積的(ddH2O)中,短暫超聲以確保膠束形成,并加載有時(shí)著色但始終透明的水相。在空隙體積(峰1)中回收節(jié)苷脂,然后將其凍干并重新溶解在小體積的C:M 1:1中。離心樣品,在清澈上清液中定量回收神經(jīng)節(jié)甙脂。沉淀物含有在總脂質(zhì)提取步驟中共提取的殘余蛋白質(zhì)。

    參考文獻(xiàn):

    1 Ladisch,S.GillardB.1985)用于微規(guī)模節(jié)苷脂純化的溶劑分配方法。分析生物化學(xué)146:220-231。

    2 Ladisch,S.Gillard,B.1987)從血漿中分離和純化節(jié)苷脂。《酶學(xué)方法》138:300-306。

    典型柱條件:

    床體積流速(ML/MIN)最佳(最大)樣品裝載量裝載樣品的節(jié)苷脂總含量

    10-15毫升0.25 0.30.75-20 80-100%

    40毫升0.6 0.51.520-50 100%

    90毫升1.2 1.53.070-5400 93-100%

     

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